martes, 9 de diciembre de 2014

Práctica 11. Tinción Giemsa

Práctica 11. Tinción de Giemsa 11/11/2014

1.     Material:

-          Microscopio óptico
-          Portas limpios
-          Cristalizador
-          Puentes de tinción
-          Pipetas Pasteur con chupete
-          Frasco lavador
-          Tubos de ensayo

2.     Reactivos:

-          Colorante en solución según Giemsa de Panreac
-          Solución tampón pH 7’2 de Panreac.
-          Metanol
-          Aceite de inmersión

3.     Muestra:
Sangre capilar fresca o venosa anticoagulada.

4.     Fundamento:
Se utiliza como colorante la mezcla de azul de metileno y eosina propuesta por Giemsa. Primero depositaremos el azul de metileno y más tarde la eosiona.

5.     Desarrollo:
1º. Preparamos una extensión sanguínea.
2º. Colocamos la extensión sobre el puente de tinción, en el cristalizador en posición horizontal.
3º. Cubrimos la extensión con metanol durante 3 minutos. Lo dejamos secar al aire y nos disponemos a fijar la extensión.
4º. Diluimos en un tubo de ensayo 0’2 ml de azur-eosina-azul de metileno según Giemsa con 2ml de solución tampón pH 7’2. El colorante no sería válido para otro día, así que la dilución se hace en el momento de la tinción.
5º. Mezclamos la dilución del colorante en el propio tubo, y con una pipeta Pasteur cubrimos la extensión con éste colorante.
6º. Lo lavamos con agua destilada. Más tarde lo lavamos con tampón pH 7’2 hasta eliminar los restos de colorante. Lo secamos en posición vertical.

6.     Resultado:
Cuando obtenemos la tinción seca, le echamos sobre ella una gota de aceite de inmersión y la observamos en el microscopio con el objetivo de 100x. La gota de inmersión debe tocar un poco al objetivo de 100x. Podemos ver los eritrocitos teñidos de color rosa y las plaquetas de color violeta. Los basófilos presentan un núcleo de color púrpura y granulación de color azul oscuro. Los monocitos y linfocitos se observan con un núcleo color violeta y el citoplasma azul, más claro en el monocito.
http://www.microbiologybook.org/bowers/monocyte-darb.jpg

7.     Interpretación:
He obtenido una extensión buena, con sangre capilar de mi propio dedo índice. Después de hacer la tinción y lavarlo con tampón pH 7’2 hasta dejarlo secar, no he logrado ver leucocitos en el microscopio, aunque sí he podido ver con claridad los eritrocitos teñidos de rosa.
http://www.uv.es/~histomed/inmunopatologia/01/peq/eosinofilo-2.jpg

Ejercicios:
1.)    ¿Cuáles son los anticoagulantes más adecuados para esta técnica?
El EDTA o la heparina.
2.)    ¿Con qué reactivo fijamos el frotis?
Con azur-eosina-azul de metileno según Giemsa y con la solución tampón pH 7’2.
3.)    ¿Cuánto tiempo debe actuar el colorante en el frotis?
Debe actuar durante unos 25 minutos.

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